原理
過表達穩(wěn)定細胞系(Overexpression Stable Cell Lines)的構建利用慢病毒轉染、電轉等技術手段將特定的基因序列整合到宿主細胞的染色體上,使得目的基因能夠在宿主細胞內長期且穩(wěn)定的表達。
用途
基因功能研究 、免疫/殺傷/增殖等 、抗體藥物的活性篩選(細胞水平的結合和阻斷)、CAR 分子的殺傷活性評價。
材料與儀器
(以慢病毒 pMSCV 載體為例)包含目的基因和 eGFP-Tag 的 pMSCV 質粒、帶有 eGFP-Tag 的 pMSCV 空載質粒、GAG 質粒、VSV 質粒、Puromycin、Polybrene 、Lipo3000、HEK293T 細胞、opti-MEM、DMEM、FBS、雙抗、0.45 μm 的濾膜、熒光顯微鏡等。
步驟
1、基因的構建
1) 根據(jù)目的基因 mRNA 編碼區(qū)設計引物,分別在引物兩端加入酶切位點 EcoRI 和 Bgl II。
2) 從細胞中提取目的基因 mRNA,然后逆轉錄成 cDNA,然后從 cDNA 里面用引物把目的基因的 CDS 區(qū)擴增出來。PCR 擴增出帶有酶切位點的目的基因編碼區(qū)序列,連接至 pMD19-T 載體后轉化至感受態(tài)細菌 DH5α,分別進行菌落 PCR 鑒定和酶切鑒定。
3) 使用 EcoRI 和 Bgl II 雙酶切下目的基因序列,電泳割膠回收純化,連接到 pMSCV-eGFP 載體。再次轉化到感受態(tài)細菌 DH5α,菌落 PCR 鑒定和酶切鑒定成功后,送至公司測序、鑒定。
4) 鑒定成功后,將質粒轉化至感受態(tài)細菌 DH5α 中,并進行無內毒素質粒抽提。GAG 質粒和 VSV 質粒同樣可以轉化至感受態(tài)細菌 DH5α 中,并進行無內毒素質粒抽提。質粒抽提后冷凍于 -20 ℃ 保存。
2、慢病毒包裝
1) 使用 DMEM 完全培養(yǎng)基培養(yǎng) 6 cm 皿 HEK293T 至匯合度為 70~80%。采用 opti-MEM 和 Lipo3000 分別轉染含有目的基因的 pMSCV-eGFP、VSV、GAG 質粒及對照載體,每皿加入脂質體-質粒轉染混懸液按購買脂質體相關說明書操作定量。繼續(xù)培養(yǎng) 24 h。
2) 24 小時后,將培養(yǎng)基更換為新鮮的 DMEM 完全培養(yǎng)基,放進細胞培養(yǎng)箱繼續(xù)培養(yǎng) 48~72 h。
3) 48~72 h 后收集上層培養(yǎng)液,并過 0.45 μm 濾膜,采用 ELISA 法對所獲得的慢病毒載體進行病毒滴度測定。如不及時使用可以凍存于 -80 ℃。
3、慢病毒轉染
1) 轉染前 1 天將細胞接種 6 孔培養(yǎng)板,感染時細胞的融合率約為 50%,感染前需換液,加入 1 mL DMEM 完全培養(yǎng)基。
2) 病毒冰浴融化后加入相應體積的病毒液及聚凝胺(Polybrene),混勻后放入 37 ℃ 孵箱中繼續(xù)培養(yǎng)
3) 4 h 后補充 1 mL 培養(yǎng)基,14 h 后換液(24 h 內換液即可)。
4) 病毒感染 72 h 后用倒置顯微鏡觀察熒光,監(jiān)測感染效率,出現(xiàn)較多熒光時將等量的轉染細胞和未轉染細胞分別加入等濃度 Puromycin(Puromycin 或其他抗生素篩選濃度需要事先摸索)。
5) 待未轉染細胞全部死亡并且可觀察到滿意熒光量時,降低 Puromycin 濃度培養(yǎng)。也可以挑去單克隆細胞株進行進一步培養(yǎng),以得到滿意的穩(wěn)定表達目的基因的細胞株。
6) 使用 qRT-PCR 和 Western blot 的方法檢測目的基因的表達量和蛋白水平是否顯著提高。
7) 由此可得三組細胞株:a. 正常細胞株;b. 空載病毒載體感染的細胞株;c. 過表達目的基因的病毒載體感染的細胞。
8) 在后續(xù)培養(yǎng)傳代該穩(wěn)轉細胞株時,培養(yǎng)基中需添加低濃度 Puromycin 做壓力篩選條件。
注意事項
1. 為避免慢病毒感染后細胞死亡,務必保證原始細胞無支原體污染。
2. 查閱壓力篩選條件在目標細胞系中穩(wěn)轉株篩選的致死用量信息。
3. 查閱文獻確定慢病毒在目標細胞系中的最佳滴度。
4. 轉染后可以進一步進行單克隆穩(wěn)轉株培養(yǎng),可采用稀釋法和培養(yǎng)皿挑取法。
5. 慢病毒轉染載體種類繁多,應選擇適合目的細胞系的載體進行病毒的包裝和轉染。
常見問題
轉染時病毒滴度較低
可以將 6 cm 皿培養(yǎng)的 HEK293T 更換為 10 cm 皿培養(yǎng),或使用超速離心沉淀法或 PEG-8000 濃縮法提高病毒滴度。
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