一.細胞復(fù)蘇
1、提前準備完全培養(yǎng)基并預(yù)熱至37℃(可以放至在水浴或培養(yǎng)箱中進行預(yù)熱,需要多少預(yù)熱多少,反復(fù)預(yù)熱會導(dǎo)致培養(yǎng)基失活);用清洗潔凈的燒杯或其他合適容器裝有適量超純水,然后放入37-38℃水浴鍋中預(yù)熱至37℃(至少需30min);把所需耗材和其他物品放置于超凈工作臺中紫外照射滅菌;
2、提前查詢所取凍存管的存放位置,把整個存儲架子提起,為了降低復(fù)溫對其它細胞的影響,可把該存儲架子放置于裝有液氮的泡沫盒中,快速(存儲架離開液氮罐的時間不要超過1分鐘,否則其余細胞容易復(fù)溫死亡,凍存管子的液氮會氣化爆炸)從液氮罐中取出凍存管并放置于裝有液氮的保溫杯中(必須用用潔凈鑷子取出凍存管,以免凍傷手),立即把存儲架回液氮罐;用鑷子把剛才置于保溫杯的凍存管取出,并立即(不要耽擱)放入上述準備好的水浴中(放入之前快速檢查蓋子是否擰緊,蓋子切勿沒入水中,以免進水污染),用鑷子鑷好凍存管,快速沿著容器內(nèi)壁轉(zhuǎn)圈,細胞未凍融時(1min內(nèi))切勿取出觀察,細胞凍融時間一般為1-2 min,如果超過2min仍未凍融,應(yīng)棄用該管細胞,凍融后立即用70%酒精消毒該凍存管,然后立即放入超凈工作臺中;
3、打開凍存管蓋,用移液管吹打細胞3次,然后立即把細胞轉(zhuǎn)移至提前準備的裝有5-10ml預(yù)熱的完全培養(yǎng)基的15ml離心管中;
4、離心,小心移除上清;
5、加入5ml預(yù)熱完全培養(yǎng)基,吹打重懸細胞,然后把細胞懸液轉(zhuǎn)移至T25培養(yǎng)瓶中,并放入二氧化碳培養(yǎng)箱(5% CO2, 37℃)中培養(yǎng);
6、第二天觀察細胞的貼壁情況,并進行換液。
注意事項
2.在解凍細胞前,必須把超凈工作臺準備至工作狀態(tài),提前準備裝有5-10ml預(yù)熱的完全培養(yǎng)基的15ml離心管;
3.為了降低復(fù)溫對其它細胞的影響,可把該存儲架子放置于裝有液氮的泡沫盒中;
4.存儲架離開液氮罐的時間一般不要超過1分鐘,否則其余細胞容易復(fù)溫死亡,凍存管子的液氮氣化爆炸;
5.放入之前快速檢查蓋子是否擰緊,蓋子切勿沒入水中,以免進水污染;
6.細胞未凍融時(1min內(nèi))切勿取出觀察;
7.根據(jù)復(fù)蘇細胞的大小選擇合適的離心速度和時間,一般不超過1000RPM,10min;
8.復(fù)蘇后的第二天必須要進行換液(加入培養(yǎng)基的量根據(jù)細胞的密度和生長速度),以降低凍存保護劑DMSO的影響;
9.離心速度和時間依據(jù)具體細胞決定;
10.上述是以T25培養(yǎng)瓶為例,具體選用何種培養(yǎng)器皿取決于細胞生長密度需求(啟動正常生長所需的密度)。
二.細胞換液培養(yǎng)
1、全量換液:把所有的舊培養(yǎng)液移除,加入新的培養(yǎng)液(加入培養(yǎng)基的量根據(jù)細胞的密度和生長速度);
2、半量換液:把舊培養(yǎng)液移至15ml離心管中,然后在培養(yǎng)器皿中加入適量新培養(yǎng)基(避免細胞離開培養(yǎng)液太久),把裝有舊培養(yǎng)液的離心管進行離心(1000RPM, 10min),離心后取適量舊培養(yǎng)上清至培養(yǎng)器皿中。
注意事項
1.全量換液適合于生長較快的腫瘤細胞,因為這些細胞可在短期內(nèi)分泌足夠的因子來支撐其生長;
2.半量換液主要適合于生長較慢的原代細胞和干細胞,這些細胞很難在短期內(nèi)分泌足夠的因子來支撐其生長,舊培養(yǎng)液中恰好含有這些因子;
3.新舊培養(yǎng)液的配比取決于細胞的密度和生長速度及其自身的特性,請參照具體細胞的培養(yǎng)建議,一般為3:1(新:舊);
4.如果細胞發(fā)生發(fā)生污染,切勿進行半量換液。
三.細胞傳代培養(yǎng)
1、當(dāng)細胞密度達到其生長密度極限時(一般腫瘤細胞為80-100%,原代細胞和干細胞為80-90%,有些細胞為40-50%,熟知所養(yǎng)細胞的生長密度極限),移除舊培養(yǎng)液;
2、用PBS洗滌兩次(舊培養(yǎng)中的鈣離子會抑制胰酶的活性),加入1ml胰酶消化液(以T25培養(yǎng)瓶為例),立即蓋好蓋子,把培養(yǎng)瓶置于倒置顯微鏡下觀察,如大部分細胞變圓,立即移除胰酶消化液(如大部分細胞漂起,可不移除胰酶消化液),加入5ml預(yù)熱完全培養(yǎng)基,用吸管取培養(yǎng)液吹打瓶壁細胞,使其脫離瓶壁形成單細胞懸液,離心,小心移除上清;
3、加入5ml預(yù)熱完全培養(yǎng)基,吹打重懸細胞用細胞計數(shù)板在顯微鏡下計算細胞數(shù),分裝入T25培養(yǎng)瓶中,添加基至總體積為5ml,置于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng);傳代1次。
注意事項
1.熟知所養(yǎng)細胞的生長密度極限;
2.第一次進行所養(yǎng)細胞傳代時,消化時必須把培養(yǎng)瓶置于倒置顯微鏡下觀察,并記錄所需時間,下次按照該時間執(zhí)行即可;
3.進行細胞傳代時必須結(jié)合考慮細胞生長密度需求(啟動正常生長所需的密度)和實際的工作需求,在滿足細胞生長密度需求的前提下,需要多少瓶就傳多少瓶,降低工作強度和試劑耗材消耗;
4.離心速度和時間依據(jù)具體細胞決定。
四.細胞凍存保種
1、提前配制凍存液:用血清或完全培養(yǎng)基配制5-10%DMSO(根據(jù)具體細胞決定)凍存液;
2、消化收取細胞:當(dāng)細胞密度即將達到其生長密度極限時進行換液,第二天,移除舊培養(yǎng)液,用PBS洗滌兩次(舊培養(yǎng)中的鈣離子會抑制胰酶的活性),加入1ml胰酶消化液(以T25培養(yǎng)瓶為例),立即蓋好蓋子,把培養(yǎng)瓶置于倒置顯微鏡下觀察,如大部分細胞變圓,立即移除胰酶消化液(如大部分細胞飄起,可不移除胰酶消化液),加入5ml預(yù)熱完全培養(yǎng)基,用吸管取培養(yǎng)液吹打瓶壁細胞,使其脫離瓶壁形成單細胞懸液,離心,小心移除上清;
3、加入適量(消化前預(yù)估細胞的數(shù)量,1-2*10E6/ml凍存液)凍存液并吹打混勻,分裝至凍存管中,標記凍存細胞的名稱、冷凍日期、操作者姓名拼音簡寫,然后放入梯度降溫盒(提前復(fù)溫至室溫),置于-80℃過夜,次晨置于液氮罐中保存。
注意事項
1.密切觀察細胞的生長密度,當(dāng)細胞密度即將達到其生長密度極限時進行換液,以便第二天進行保種;
2.消化前進行凍存液配制,切勿用培養(yǎng)基和血清重懸細胞后再加入DMSO,這樣會導(dǎo)致局部高濃度的DMSO對細胞產(chǎn)生損傷;
3.消化前預(yù)估細胞的數(shù)量,加入適量凍存液,以使細胞密度為1-2*10E6/ml,密度過高會導(dǎo)致凍存保護液不足,密度過低會導(dǎo)致凍存液對細胞有毒性;
4.梯度降溫盒必須提前復(fù)溫至室溫,切勿從-80℃取出即可使用,這樣會導(dǎo)致細胞全部死亡;
5.離心速度和時間依據(jù)具體細胞決定。
問答環(huán)節(jié)
問
細胞體內(nèi)外培養(yǎng)的差別是什么?
答:細胞離體后,失去了神經(jīng)體液的調(diào)節(jié)和細胞間的相互影響,生活在缺乏動態(tài)平衡相對穩(wěn)定環(huán)境中,日久天長,易發(fā)生如下變化:分化現(xiàn)象減弱;形態(tài)功能趨于單一化或生存一定時間后衰退死亡;或發(fā)生轉(zhuǎn)化獲得不死性,變成可無限生長的連續(xù)細胞系或惡性細胞系。因此,培養(yǎng)中的細胞可視為一種在特定的條件下的細胞群體,它們既保持著與體內(nèi)細胞相同的基本結(jié)構(gòu)和功能,也有一些不同于體內(nèi)細胞的性狀。實際上從細胞一旦被置于體外培養(yǎng)后,這種差異就開始發(fā)生了。
問
什么是無血清培養(yǎng)基?與普通培養(yǎng)基有什么區(qū)別?
答:無血清培養(yǎng)基(serum free medium,SFM):是不需要添加血清就可以維持細胞在體外較長時間生長繁殖的合成培養(yǎng)基。但是它們可能包含個別蛋白或大量蛋白組分?;境煞譃榛A(chǔ)培養(yǎng)基及添加組分兩大部分。添加組分可能包括纖連蛋白、層粘連蛋白等貼壁因子、胰島素、轉(zhuǎn)鐵蛋白、硒等。
問
細胞培養(yǎng)基偶然被凍,可否繼續(xù)使用?
答:如果細胞培養(yǎng)基偶然被凍,您應(yīng)該自然溶解培養(yǎng)基并觀察是否有沉淀產(chǎn)生。如果沒有沉淀產(chǎn)生,培養(yǎng)基可以正常使用,如果出現(xiàn)沉淀,只能丟棄這些培養(yǎng)基。
問
培養(yǎng)基及其它添加物和試劑可反復(fù)凍融嗎?
答:大部分添加物和試劑最多可以凍融3次,如果次數(shù)過多會將使含有的蛋發(fā)生降解和沉淀,這將會影響它的性能。
問
液體培養(yǎng)基的保存是冷藏好?還是冷凍好?
答:要冷藏??!通常液體培養(yǎng)基在冷藏條件下可存放6個月到一年。
問
低血清培養(yǎng)基能用肉眼判斷其pH值嗎?
答:低血清培養(yǎng)基中酚紅的含量與普通培養(yǎng)基中的酚紅含量不同,不能通過肉眼觀察或通過經(jīng)驗來判定pH值,建議使用pH計進行測定。
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