一、RNA模板制備
RNA是反轉(zhuǎn)錄的模板??俁NA通常用于RT-(q)PCR等下游應(yīng)用的cDNA合成,而特定類型的RNA(如信使RNA(mRNA)、miRNA等小RNA)可通過富集而用于某些實驗應(yīng)用,如cDNA文庫構(gòu)建和miRNA圖譜分析。
保持RNA的完整性至關(guān)重要,在提取、處理、儲存和實驗過程中均需要采取特殊的保護(hù)措施。防止RNA降解的最佳方法包括佩戴手套、使用具有氣溶膠屏障的移液器移液、使用無核酸酶的實驗室器具和試劑以及對實驗區(qū)域進(jìn)行去污處理。
根據(jù)來源材料(如血液、組織、細(xì)胞、植物)的類型和實驗?zāi)繕?biāo),有多種RNA分離和純化方法可供選擇。分離純化過程的主要目標(biāo)是穩(wěn)定RNA分子、抑制RNA酶,并通過適當(dāng)?shù)膬Υ婧吞崛》椒ㄗ畲蟪潭忍岣弋a(chǎn)量。最佳的純化方法可以去除干擾酶活性的內(nèi)源性化合物,如植物組織中的復(fù)合多糖和腐殖酸,以及反轉(zhuǎn)錄酶的常見抑制劑,如鹽、金屬離子、乙醇和苯酚。純化的RNA應(yīng)保存在-80°C,盡量減少反復(fù)凍融。
純化后評估RNA質(zhì)量和數(shù)量的方法有許多種。常用的方法是利用紫外光譜法檢測特定波長的吸光度。RNA質(zhì)量可通過利用Beer-Lambert定律測定260 nm處的吸光度而確定;不同波長的吸光度比值可以確定是否存在特定污染物(表1)。請注意,紫外吸光度不是RNA特有的,所有核酸都可以吸收相近波長的紫外線。對于需要更高RNA特異和更靈敏分析的RNA, 可以考慮使用含染料的熒光試劑,這種試劑只在特異性的與目標(biāo)分子結(jié)合時才會釋放熒光信號。
以28S和18S核糖體RNA(rRNA)的比值可評估RNA的完整性。將總RNA變性后進(jìn)行凝膠電泳,可對其進(jìn)行定性評估。然后,評估28S rRNA與18S rRNA的強度比,比值為2:1代表完整的RNA(圖1A)。Agilent Technologies開發(fā)的一種方法結(jié)合了微流體學(xué)和專利算法,可定量評估RNA的完整性。該方法可產(chǎn)生數(shù)字讀數(shù),稱為RNA完整性分?jǐn)?shù)或RIN值,數(shù)值介于8至10之間代表高質(zhì)量的RNA [1,2](圖1B)。
二、基因組DNA的去除
某些情況下,痕量基因組DNA(gDNA)可能與RNA共同被純化。污染gDNA可能會干擾反轉(zhuǎn)錄結(jié)果,導(dǎo)致RT-qPCR等高靈敏度實驗出現(xiàn)假陽性、高背景或檢測率降低。
為去除gDNA,通常在RNA分離過程中加入DNase I。在進(jìn)行RT-(q)PCR之前,必須完全去除DNase I,因為任何殘留的酶都會使單鏈DNA(如引物和cDNA)降解。通常,DNase I失活(如,EDTA和加熱處理)或酶去除步驟會導(dǎo)致RNA降解或樣品損失。
作為DNase I的替代品,可使用雙鏈特異性DNase去除污染gDNA,而不影響RNA或單鏈DNA。它們的熱分解性質(zhì)使其在相對溫和的溫度(如55℃)下即可失活,同時沒有負(fù)面影響。在反轉(zhuǎn)錄反應(yīng)之前,只需將這種雙鏈特異性DNase與RNA在37℃下孵育2分鐘,從而簡化實驗流程(圖2)。
三、反轉(zhuǎn)錄酶選擇
反轉(zhuǎn)錄酶以RNA為模板合成cDNA,但這一類反轉(zhuǎn)錄酶可能具有不同的功能活性和性質(zhì)。它們的性質(zhì)會影響其反轉(zhuǎn)錄長鏈RNA、高GC含量RNA、具有復(fù)雜二級結(jié)構(gòu)的RNA和不純RNA的能力。
分子生物學(xué)中使用的大多數(shù)反轉(zhuǎn)錄酶來源于禽成髓細(xì)胞瘤病毒(AMV)或莫洛尼鼠白血病病毒(MMLV)的pol基因。AMV反轉(zhuǎn)錄酶是實驗室中首批用于cDNA合成的酶之一。該酶是一種分子量為170-kDa的異二聚體,最佳反應(yīng)溫度范圍為42-48℃。AMV反轉(zhuǎn)錄酶具有較強的RNase H活性,可降解RNA:cDNA復(fù)合物中的RNA,獲得的cDNA片段較短(<5 kb)。
MMLV反轉(zhuǎn)錄酶因具有單體結(jié)構(gòu)而成為常用的替代品,可對重組酶進(jìn)行更簡單的克隆和修飾。MMLV反轉(zhuǎn)錄酶是一種分子量為75 kDa的酶,反應(yīng)溫度約為37°C。雖然MMLV的熱穩(wěn)定性低于AMV反轉(zhuǎn)錄酶,但其RNase H活性較低,因此具有更高的長cDNA(<7kb)合成效率[3]。
為了進(jìn)一步改善cDNA合成,MMLV反轉(zhuǎn)錄酶經(jīng)過改造具有更低的RNase H活性(即RNase H Minus,將RNase H結(jié)構(gòu)域進(jìn)行突變)、更高的熱穩(wěn)定性(高達(dá)55℃)和更強的持續(xù)合成能力(65倍以上)。這些屬性改變可增加cDNA長度和產(chǎn)量,提高靈敏性,改善抑制劑耐受性,并縮短反應(yīng)時間(表2)[4]。
四、引物選擇
為了啟動反轉(zhuǎn)錄,反轉(zhuǎn)錄酶需要一種短DNA寡核苷酸(即引物)與其互補序列在RNA模板上結(jié)合,并作為新鏈合成的起點。根據(jù)RNA模板和下游應(yīng)用,有三種基本類型的引物可供選用:oligo(dT)引物、隨機引物和基因特異性引物(圖3)。
? Oligo(dT)引物由12-18個脫氧胸腺核苷酸組成,可與真核mRNA的poly(A) 尾退火。其為從真核生物mRNA構(gòu)建cDNA文庫、全長cDNA克隆和cDNA 3'末端快速擴增(3'RACE)的最佳選擇。由于oligo(dT)引物對poly(A) 尾的特異性,其不適用于降解的RNA,如來自FFPE樣品的RNA,也不適用于缺少poly(A) 尾的RNA,如原核生物RNA和microRNA。由于cDNA合成開始于3' poly(A)尾,oligo(dT)引物可能引起3'末端偏差。具有復(fù)雜二級結(jié)構(gòu)的RNA也可能影響全長cDNA合成,導(dǎo)致5'末端的代表性偏低。
通過修飾Oligo(dT)引物,可以提高反轉(zhuǎn)錄效率。例如,Oligo(dT)引物的長度可以延伸到20個核苷酸或更長,使其在較高溫度下退火。在一些情況下,Oligo(dT)引物可能包括3'末端的多義堿基,如dN(dA,dT,dG或dC)和dV(dG,dA或dC)。該修飾可防止poly(A)滑移,并且將起始位點鎖定在poly(A)尾的上游位置。這些引物被稱為錨定oligo(dT)。
? 隨機引物是具有隨機堿基序列的寡核苷酸,通常由6個核苷酸組成,被稱為隨機六聚體、N6或dN6。由于隨機引物的隨機結(jié)合(即沒有模板特異性),其可以退火到樣本中的任何類型RNA。因此,這些引物被認(rèn)為可以用于無poly(A)尾結(jié)構(gòu)(如rRNA、tRNA、非編碼RNA、小RNA、原核mRNA)的RNA、降解RNA(如來自FFPE組織的RNA)和具有已知二級結(jié)構(gòu)的RNA(如病毒基因組)的反轉(zhuǎn)錄。
雖然隨機引物有助于改善cDNA合成,但它們不適合用于長RNA的全長反轉(zhuǎn)錄。增加隨機六聚體引物的濃度可提高cDNA產(chǎn)量,但同時也會增加相同模板上與多個位點的結(jié)合,從而導(dǎo)致cDNA片段較短(圖4)。
此外,隨機引物可能不適用于某些RT-PCR應(yīng)用。例如,高估m(xù)RNA拷貝數(shù)就是一個需要考慮的問題[5]。兩步法RT-PCR經(jīng)常使用oligo(dT)和隨機引物的混合物,結(jié)合每種類型引物的優(yōu)點。在microRNA(miRNA)表達(dá)檢測中,隨機六聚體并不適用,必須為miRNA的反轉(zhuǎn)錄設(shè)計特殊引物[6,7]。
圖4. cDNA的長度和產(chǎn)量受到所選擇引物和引物濃度的影響。使用oligo (dT)引物和不同濃度的隨機六聚體引物,將具有poly(A)尾的6.4 kb RNA反轉(zhuǎn)錄成雙鏈cDNA。通過瓊脂糖凝膠電泳分析結(jié)果可以看到,使用oligo(dT)引物可獲得更分散、更長的轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物,相比之下,增加隨機六聚體的濃度,可產(chǎn)生更高濃度的短cDNA。
? 基因特異性引物可提供特異性最強的反轉(zhuǎn)錄引物配對。這些引物是根據(jù)目標(biāo)RNA的已知序列進(jìn)行設(shè)計的。由于引物與特異性RNA序列結(jié)合,每個目標(biāo)RNA都需要一套新的基因特異性引物。因此,當(dāng)對多種目標(biāo)進(jìn)行分析時,則需要使用更多的RNA樣本。基因特異性引物通常用于一步RT-PCR實驗應(yīng)用。
五、主要反應(yīng)組分
除了反轉(zhuǎn)錄酶和引物之外,其它主要反應(yīng)組分還包括RNA模板(預(yù)處理以去除基因組DNA)、緩沖液、dNTP、DTT、RNA酶抑制劑和RNase-free水(圖5)。
? RNA模板按本文前述方法制備。表4提供了反轉(zhuǎn)錄反應(yīng)的推薦RNA起始量范圍,最佳起始量取決于目標(biāo)序列的普遍性和反轉(zhuǎn)錄酶的靈敏性。
? 反應(yīng)緩沖液可維持反應(yīng)的最佳pH和離子強度。提供的緩沖液還可能含有提高反轉(zhuǎn)錄效率的添加劑。
? dNTPs通常為0.5-1 mM,最好為等摩爾濃度。推薦使用新鮮稀釋的高品質(zhì)dNTP,以確保良好的反轉(zhuǎn)錄效果。
? DTT,一種還原劑,通常用于提供最佳的酶活性。如果DTT或其他添加劑發(fā)生沉淀,會降低反應(yīng)效率;因此,應(yīng)溶解反應(yīng)組分并充分混勻。
? RNA酶抑制劑通常包含在反應(yīng)緩沖液中或單獨被添加到反轉(zhuǎn)錄反應(yīng)中,用于防止RNA降解。RNase可能在RNA分離過程中被共同純化,或者在反應(yīng)體系配制期間被引入。已知的RNase有許多種,應(yīng)根據(jù)其作用方式和反應(yīng)要求選擇合適的RNA酶抑制劑。
? 反轉(zhuǎn)錄反應(yīng)中使用的水應(yīng)不含有核酸酶。最好選用商業(yè)化供應(yīng)的無核酸酶水,或經(jīng)DEPC(焦碳酸二乙酯)處理去除RNase的水。污染RNase不能通過簡單的過濾去除,而且由于RNase是熱穩(wěn)定的,無法通過高壓消毒去除。
六、反應(yīng)溫度和反應(yīng)時間
反轉(zhuǎn)錄反應(yīng)包含三個主要步驟:引物退火、DNA聚合和酶失活(圖6)。這些步驟的溫度和持續(xù)時間因選擇的引物、目標(biāo)RNA和使用的反轉(zhuǎn)錄酶而異。
? 引物退火:將引物與RNA模板混合,加熱至65℃并維持5分鐘,然后冰浴至少1分鐘。這有助于確保RNA保持單鏈以及引物與靶標(biāo)有效退火。退火后,加入反轉(zhuǎn)錄酶和必需組分(如緩沖液、dNTPs、RNA酶抑制劑)。
? DNA聚合:在此步驟中,反應(yīng)溫度和持續(xù)時間可能會根據(jù)所使用的引物和反轉(zhuǎn)錄酶而變化。使用oligo (dT)引物(Tm?35-50 ℃),可以在反轉(zhuǎn)錄酶的最佳反應(yīng)溫度(37-50 ℃)下直接孵育反應(yīng)。隨機六聚體引物因其較短的長度,通常具有較低的Tm(?10-15℃)。因此,當(dāng)使用隨機六聚體引物(單獨使用或與oligo(dT)結(jié)合使用)時,我們建議在加入酶后,在室溫(?25℃)孵育10分鐘以延伸引物。
反轉(zhuǎn)錄酶的熱穩(wěn)定性各不相同,而熱穩(wěn)定性決定了每種酶的最佳聚合溫度。使用熱穩(wěn)定的反轉(zhuǎn)錄酶,可達(dá)到更高的反應(yīng)溫度(如50 ℃),有助于高GC或具有復(fù)雜二級結(jié)構(gòu)RNA的變性,同時不影響酶活性(圖7)。
聚合時間取決于反轉(zhuǎn)錄酶的持續(xù)合成能力,即單次合成過程中摻入的核苷酸數(shù)量。例如,持續(xù)合成能力較低的野生型MMLV反轉(zhuǎn)錄酶通常需要60多分鐘才能完成cDNA合成。相比之下,持續(xù)合成能力較高的改良型反轉(zhuǎn)錄酶可能只需要10分鐘時間,就可以合成9 kb cDNA。
圖7. 熱穩(wěn)定性對反轉(zhuǎn)錄酶活性的影響。使用oligo(dT)引物和放射性標(biāo)記dNTPs,對含有不同長度RNA的樣本進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄。通過凝膠電泳分離反應(yīng)產(chǎn)物,并通過放射自顯影進(jìn)行顯色。熱穩(wěn)定的反轉(zhuǎn)錄酶即使在50℃以上也能得到高cDNA產(chǎn)量。
? 酶失活:反轉(zhuǎn)錄反應(yīng)的最后一步是將反轉(zhuǎn)錄酶失活處理。失活溫度范圍為70-85 ℃,具體取決于酶的熱穩(wěn)定性。失活通常需要5-15分鐘,溫度越高,所需時間越短。
七、第一鏈和第二鏈cDNA合成
如前所述,從RNA模板合成cDNA,產(chǎn)生cDNA:RNA復(fù)合物。該過程被稱為第一鏈cDNA合成。如果存在RNase H活性(如野生型AMV和MMLV反轉(zhuǎn)錄酶),則cDNA:RNA復(fù)合物中的RNA會在第一鏈合成期間被切割。第一鏈cDNA可以直接用于RT-PCR等實驗應(yīng)用中,熱穩(wěn)定DNA聚合酶(如Taq DNA聚合酶)將復(fù)制cDNA的互補鏈。
在cDNA文庫構(gòu)建和測序中,將第一鏈cDNA作為模板,獲得代表RNA靶標(biāo)的雙鏈cDNA。這個過程被稱為第二鏈cDNA合成。在第二鏈cDNA合成中,推薦使用RNase H活性最小的反轉(zhuǎn)錄酶,從而最大限度地增加cDNA合成長度和產(chǎn)量。
雙鏈cDNA的合成可以使用多種DNA聚合酶(如T7 DNA聚合酶、DNA聚合酶I、Taq DNA聚合酶)生成cDNA第一鏈的互補鏈。以下列舉的一些其它酶也可按照Gubler-Hoffman改良方法[8](圖8)用于雙鏈cDNA合成。
? E. coli RNase H切割cDNA:RNA復(fù)合物中的RNA鏈,為DNA合成提供3'-OH引物結(jié)合位點
? E. coli DNA polymerase I利用5′-3′'聚合酶活性延伸切口RNA鏈,并利用5'-3'外切核酸酶活性沿合成方向替換RNA鏈,該過程被稱為切口平移。
? E. coli DNA ligase縫合新合成cDNA片段之間的切口。(T4 DNA連接酶不能用作替代物,因為它會連接鈍端雙鏈cDNA片段并形成嵌合結(jié)構(gòu)。)
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