染方法大致可分為物理介導（如電穿孔法、顯微注射和基因槍等）、化學介導（脂質體及其代替物、磷酸鈣等）和生物介導（各類病毒，包括腺病毒、慢病毒、逆轉錄病毒、腺相關病毒等）三類途徑。

細胞轉染又分為瞬時轉染和穩(wěn)定轉染，瞬時轉染是指外源基因進入受體細胞后，存在于游離的載體上，不整合到細胞的染色體上，基因表達維持時間較短，通常在96h以內；穩(wěn)定轉染是指DNA整合到宿主細胞的染色體中，使宿主細胞可長期表達目的基因。

目前，大多采用依據(jù)不同質粒載體含有的抗性標志選用相應的抗生素對靶細胞進行篩選，常用的抗生素有嘌呤霉素（Puromycin）、G418（Geneticin）等。

1、主要有下面幾種

化學法：磷酸鈣法、DEAE-右旋糖苷法、陽離子脂質體法；

物理法：電穿孔法、顯微注射法、biolistic顆粒傳遞法；

病毒介導法：逆轉錄病毒、腺病毒

A. 陽離子脂質體法：帶正電的脂質體與核酸帶負電的磷酸基團形成復合物被細胞內吞。

特點：簡單通用，適用性廣，轉染效率高，重復性好，但轉染時需除血清，轉染效率隨細胞類型變化大。由于脂質體復合物與貼壁細胞的接觸機會遠大于懸浮細胞，所以貼壁比懸浮轉染效率要高。懸浮細胞建議使用電穿孔法。

B. 電穿孔法：利用高壓電脈沖對細胞膜的干擾，使其形成利于核酸進入的微孔。

C. 逆轉錄病毒（RNA）：通過病毒中膜糖蛋白和宿主細胞表面的受體相互作用進入宿主細胞，之后反轉錄酶啟動合成DNA并隨機整合到宿主基因組中。

特點：穩(wěn)定轉染，可用于難轉染的細胞、原代細胞，體內細胞等，但攜帶基因不能太大。

D. 腺病毒（雙鏈DNA）：先和細胞表面的受體結合，繼而在αV整合素介導下被細胞內吞。

特點：可用于難轉染的細胞。

2、影響轉染的因素

血清：血清影響復合物的形成，降低轉染效率。

陽離子脂質體和DNA的最佳量在使用血清時會有所不同，因此想在轉染培養(yǎng)基中加入血清時要進行條件優(yōu)化。大部分細胞可以在無血清培養(yǎng)基中幾個小時內保持健康。

抗生素：比如青霉素和鏈霉素，是影響轉染的培養(yǎng)基添加物。這些抗生素一般對于真核細胞無毒，但陽離子脂質體試劑增加了細胞的通透性，使抗生素可以進入細胞。這降低了細胞的活性，導致轉染效率低。

細胞代數(shù)：轉染前細胞最好經(jīng)過1-2次傳代保證細胞生長旺盛容易轉染，注意貼壁細胞一旦長滿就不好轉染。

細胞鋪板密度：一般轉染時，貼壁細胞密度為70%-90%，懸浮細胞密度為2*10^6--4*10^6 細胞/ml 時效果較好。確保轉染時細胞沒有長滿或處于靜止期。鋪板細胞數(shù)目的增加可以增加轉染活性和細胞產量。

DNA質量：DNA質量對轉染效率影響非常大。一般的轉染技術基于電荷吸引原理，如果DNA不純，如帶少量的鹽離子，蛋白，代謝物污染都會顯著影響轉染復合物的有效形成和轉染的進行。