實驗介紹 細胞遷移與侵襲實驗將 Transwel 小室放入培養(yǎng)板中，小室內(nèi)稱上室，培養(yǎng)板內(nèi)稱下室，上下層培養(yǎng)液以聚磚酸甜膜相隔，將研究的細胞種在上室內(nèi)，由于聚碳酸脂膜有通透性，下層培養(yǎng)液中的成分可以影響到上室內(nèi)的細跑，應用不同孔徑和經(jīng)過不同處理的聚碳酸脂膜，就可以進行共培養(yǎng)、細胞趨化、細胞遷移、細胞侵襲等多種方面的研究。

一、實驗步驟：

材料準備 可拍照顯微鏡，Transwel小室，孔徑8um，沒包被膠的(Coste和Corning公司的也較常用)，Transwel遷移實驗的細胞培養(yǎng)板24孔板。細胞培養(yǎng)板應當與購買的Transwel小室相配套，BD公司的Matiael，無血清DMEM，(1%胎生血清)DMEM和1640培養(yǎng)基，DMEM完全培養(yǎng)基，1640完全培養(yǎng)基(也可加到20%血清)，無菌PBS，棉簽，胰酶，甲醇，結(jié)晶紫染液 (0.1% (g/ml) PBS結(jié)晶案)。

二、步驟和流程

2.1基質(zhì)膠鋪板

用BD公司的Matrioel 1: 8(根據(jù)細胞產(chǎn)生mmp的量來決定)釋，包被Transwel小室底部膜的上室面，置37C30min使Mtrigel聚合成凝膠。使用前進行基底膜水化。

2.2制備細胞縣液

1、制備細胞懸液前可先讓細胞撤血清饑餓12 - 24h，進一步去除血清的影響，但這一步并不是必須的。 2、消化細胞，終止消化后離心棄去培養(yǎng)液， (用PBS洗1- 2遍)，用含BSA的無血清培養(yǎng)基重縣，調(diào)整細胞密度至5x105/ml。

2.3接種細胞

1、取細胞縣液100u加入Transwel小室。

2、24孔板下室一般加入600u含20S的培養(yǎng)基，特別注意的是，下層培養(yǎng)液和小室間常會有氣泡產(chǎn)生，一旦產(chǎn)生氣泡，下層培養(yǎng)液的趨化作用就減弱其至消失了，在種板的時候要特別留心，一旦出現(xiàn)氣泡，要將小室提起，去除氣泡，再將小室放進培養(yǎng)板。

3、培養(yǎng)細胞: 常規(guī)培養(yǎng)12 - 48h(主要依細胞侵襲能力而定)。24h較常見，時間點的選擇除了要考慮到細胞細胞侵襲力外，處理因素對細胞數(shù)目的影響也不可忽視。

2.4結(jié)果統(tǒng)計

直接計數(shù)法貼壁”細胞計數(shù)，這里所謂的“貼“是指細胞穿過膜后，可以附著在膜的下室側(cè)而不會掉到下室里面去，通討給細胞染色可在鏡下計數(shù)細胞。取出Transwel小室，棄去孔中培養(yǎng)液，用無鈣的PBS洗2遍，用醇固定30分鐘，將小室適當風干。01%結(jié)晶紫染色20 min，用棉簽輕輕掉上層未江移細胞，用PBS洗3遍。400倍顯微鏡下隨即五人視野觀察細胞，記數(shù)。