產(chǎn)品簡介
糖原 PAS 染色(Periodic
Acid-Schiff stain)主要用來檢測組織中的糖原或其他多糖類物質(zhì),是病理學(xué)中常規(guī)的染色方法之一。隨著醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)技術(shù)的發(fā)展,糖原染色的應(yīng)用范圍更加廣泛,比如,可以用以證明與鑒定細(xì)胞內(nèi)空泡狀的性質(zhì),心肌病變及其他心血管疾病的診斷,糖原累積病的診斷和研究,糖尿病以及某些腫瘤的診斷等領(lǐng)域。還可以觀察腎小球基底膜、結(jié)腸杯狀細(xì)胞、中性粘液物質(zhì)、阿米巴滋養(yǎng)體和霉菌的著色等。該試劑盒的主要原理是,過碘酸是一種強(qiáng)氧化劑,它能夠?qū)⒍嗵欠肿又邢噜彽?span> 1,2-乙二醇基,使之氧化變?yōu)槎┗?,醛基與 Schiff 試劑能夠結(jié)合成一種品紅化合物,產(chǎn)生紫紅色,定位于胞漿上。
由于高碘酸還可以氧化細(xì)胞內(nèi)其他物質(zhì),使用時(shí)應(yīng)注意選擇好高碘酸的濃度和氧化時(shí)間,使氧化控制在即能把乙二醇基團(tuán)氧化成醛基,又不至于過氧化,這是很關(guān)鍵的步驟。
糖原 PAS 染色試劑盒(細(xì)胞專用)經(jīng)過多次優(yōu)化,大大增強(qiáng)了染色的效果,操作簡便快捷,性能穩(wěn)定。氧化劑、蘇木素濃度更低,更適用于細(xì)胞、超薄組織切片染色,且無須鹽酸乙醇分化步驟。該試劑盒僅適用于科研領(lǐng)域,不得應(yīng)用于臨床檢驗(yàn)。
編號(hào) |
組分 |
C00201 |
C00202 |
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5×20 ml |
5×50 ml |
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試劑(A) |
固定液 |
20 ml |
50 ml |
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試劑(B) |
氧化劑 |
20 ml |
50 ml |
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試劑(C) |
Schiff 氏溶液 |
20 ml |
50 ml |
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試劑(D) |
亞硫酸鈉溶液 |
20 ml |
50 ml |
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試劑(E) |
蘇木素溶液 |
20 ml |
50 ml |
使用注意事項(xiàng)
1、氧化劑氧化時(shí)間不宜過久,氧化溫度以 18~22°C 最佳。
2、氧化劑和 Schiff 氏溶液應(yīng)置于 4°C 密閉保存,使用時(shí)避免接觸過多的陽光和空氣。使用前最好提前取出恢復(fù)至室溫后,避光暗處使用。
3、氧化劑和 Schiff 氏溶液的作用時(shí)間非常重要,依據(jù)切片的厚薄、組織的類別等因素決定。
4、如常規(guī)組織切片染色,建議采購糖原 PAS 染色試劑盒,因?yàn)槠溲趸瘎┖吞K木素溶液的濃度相對(duì)較高。
5、為了您的安全和健康,請穿實(shí)驗(yàn)服并戴一次性手套操作。
實(shí)驗(yàn)步驟(僅供參考)
1、細(xì)胞、骨髓涂片用 PAS 固定液固定 10~15 分鐘。
2、水洗、晾干。
3、置于氧化劑中,室溫(18~30°C)氧化 15~20 分鐘。
4、自來水沖洗兩次,再用蒸餾水浸洗 2 次。
5、樣本放入 Schiff 氏溶液,置于室溫(18~30°C)陰暗處,浸染 10~20 分鐘。
6、亞硫酸鈉溶液滴洗兩次,每次 2 分鐘。
7、流水沖洗 2 分鐘。
8、樣本置于蘇木素染色液中,染細(xì)胞核 1~2 分鐘。
9、自來水沖洗、晾干、鏡檢。
PAS 反應(yīng)陽性物質(zhì) |
紅色或紫紅色 |
細(xì)胞核 |
藍(lán)色 |
細(xì)胞質(zhì) |
深淺不一的紅色 |
備注:顏色深淺很大程度上取決于在氧化劑溶液和 Schiff 氏溶液中作用時(shí)間的長短。
陰性對(duì)照(可選):
1、
取淀粉酶 1g 溶解于 PBS(pH5.3)100ml,處理 30-60 分鐘,與其他切片共同入氧化劑。結(jié)果應(yīng)為陰性。
2、(備選方案)取唾液片(過濾后用)處理 30-60 分鐘,與其他切片共同入氧化劑。結(jié)果應(yīng)為陰性。
3、(備選方案)如果對(duì)照片采用其自身樣本,對(duì)照片不經(jīng)過氧化劑這一步,直接入Schiff 氏溶液,結(jié)果應(yīng)為陰性。
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